JUSINDO, Vol. 6 No. 2, Juli 2024

p-ISSN: 2303-288X, e-ISSN: 2541-7207

Jurnal Sehat Indonesia: Vol. 6, No. 2, Juli 2024 | 869

Perbandingan Uji Kapasitas Total Antioksidan Ekstrak Daun Kelor

dengan Metode DPPH, FRAP, dan ABTS

Nawaika Shafira Putri

, David Limanan

, Eny Yulianti

, Frans Ferdinal

Universitas Tarumanagara, Jakarta, Indonesia

Email: nawaika.405210082@stu.untar.ac.id, david[email protected]

ABSTRAK

Kata Kunci:

Reaksi oksidasi adalah proses alami dalam tubuh manusia yang

terjadi selama metabolisme sel dan respirasi, menghasilkan reactive

oxygen species (ROS) atau radikal bebas. Ketidakseimbangan antara

produksi ROS yang berlebihan dan pertahanan antioksidan yang

tidak memadai dapat menyebabkan stres oksidatif, yang berdampak

negatif pada molekul biologis seperti karbohidrat, protein, lipid, dan

DNA. Stres oksidatif ini berkontribusi pada berbagai penyakit,

termasuk radang sendi, aterosklerosis, diabetes, kanker, dan

gangguan neurodegeneratif, serta mempercepat penuaan.

Antioksidan berperan penting dalam menetralkan radikal bebas dan

memperbaiki kerusakan akibat stres oksidatif. Daun kelor (Moringa

oleifera L) dikenal kaya akan nutrisi dan antioksidan, termasuk

vitamin C, vitamin E, flavonoid dan tanin. Penelitian ini bertujuan

untuk mengevaluasi kapasitas total antioksidan dari ekstrak daun

kelor menggunakan tiga metode yang berbeda, yaitu DPPH (2,2-

difenil-1-pikrilhidrazil), FRAP (Ferric Reducing Antioxidant

Power), dan ABTS (2,2'-azinobis-(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic

acid)). Pengukuran absorbansi dilakukan dengan menggunakan

spektrofotometer Genesys 30-vis, dan data dianalisis menggunakan

grafik dari program GraphPad Prism versi 7.0 (La Jolla, California,

USA). Hasil penelitian menunjukkan bahwa nilai IC50 ekstrak daun

kelor dengan metode DPPH adalah 71,011 μg/mL, yang tergolong

antioksidan kuat (50-100 μg/mL). Dengan metode FRAP, nilai IC50

16,943 μg/mL, dengan metode ABTS nilai IC50 sebesar 25,533

μg/mL; keduanya termasuk dalam kategori antioksidan sangat kuat

(<50 μg/mL). Hasil ini menunjukkan bahwa metode FRAP dan

ABTS lebih sensitif dalam mendeteksi kapasitas antioksidan ekstrak

daun kelor dibandingkan metode DPPH. Penelitian ini menunjukkan

potensi ekstrak daun kelor sebagai sumber antioksidan alami yang

berpotensi mencegah penyakit terkait stres oksidatif.

ABSTRACT

Oxidation reactions are natural processes in the human body

that occur during cellular metabolism and respiration,

producing reactive oxygen species (ROS) or free radicals. An

imbalance between excessive ROS production and inadequate

antioxidant defense can lead to oxidative stress, which

negatively impacts biological molecules such as

carbohydrates, proteins, lipids and DNA. This oxidative stress

contributes to a variety of diseases, including arthritis,

atherosclerosis, diabetes, cancer, and neurodegenerative

disorders, and accelerates aging. Antioxidants play an

important role in neutralizing free radicals and repairing

damage caused by oxidative stress. Moringa leaves (Moringa

oleifera L) are known to be rich in nutrients and antioxidants,

Antioksidan; DPPH; FRAP;

ABTS; Kelor

Keywords:

Antioxidant; DPPH; FRAP;

ABTS; Moringa

Jurnal Sehat Indonesia: Vol. 6, No. 2, Juli 2024 | 870

including vitamin C, vitamin E, flavonoids, and tannins. This

study aims to evaluate the total antioxidant capacity of

Moringa leaf extract using three different methods, namely

DPPH (2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl), FRAP (Ferric

Reducing Antioxidant Power), and ABTS (2,2'-azinobis- (3-

ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid)). Absorbance

measurements were carried out using a Genesys 30-vis

spectrophotometer, and data were analyzed using graphs from

the GraphPad Prism program version 7.0 (La Jolla,

California, USA). The research results showed that the IC

value of Moringa leaf extract using the DPPH method was

71.011 μg/mL, which is classified as a strong antioxidant (50-

100 μg/mL). With the FRAP method, the IC

value is 16.943

μg/mL, and with the ABTS method, the IC

value is 25.533

μg/mL; both are included in the powerful antioxidant category

(<50 μg/mL). These results indicate that the FRAP and ABTS

methods are more sensitive in detecting the antioxidant

capacity of Moringa leaf extract than the DPPH method. This

research shows the potential of Moringa leaf extract as a

source of natural antioxidants that have the potential to

prevent diseases related to oxidative stress.

Coresponden Author: David Limanan

Email: [email protected]

Artikel dengan akses terbuka dibawah lisensi

Pendahuluan

Dalam kehidupan sehari-hari, reaksi oksidasi sering terjadi. Sebagai contohnya

adalah metabolisme sel dan respirasi terjadi di dalam tubuh manusia (Tariq dkk., 2022).

Proses oksidasi ini menghasilkan zat yang dikenal sebagai Reactive Oxygen Species

(ROS), atau juga yang dikenal sebagai radikal bebas. Ketika produksi ROS yang

berlebihan dan/atau pertahanan antioksidan yang tidak memadai, keseimbangan alami ini

terganggu, sehingga terjadi peningkatan jumlah ROS yang dapat mengakibatkan

terjadinya stres oksidatif

(Ogbunugafor dkk., 2011a). Reactive Oxygen Species memiliki

kemampuan untuk menyerang dan menyebabkan kerusakan oksidatif pada berbagai

molekul biologis, yaitu karbohidrat, protein, lipid, dan DNA(2,3). Kondisi seperti ini

memiliki potensi untuk memicu berbagai jenis penyakit, seperti radang sendi, gangguan

hati, aterosklerosis, diabetes, kanker, gangguan neurodegeneratif, dan juga mempercepat

proses penuaan. Salah satu strategi untuk mengatasi ROS yang berlebih adalah dengan

memanfaatkan antioksidan (Schieber & Chandel, 2014b).

Antioksidan memiliki kemampuan untuk melawan radikal bebas melalui berbagai

mekanisme, termasuk mencegah terbentuknya radikal bebas, menetralkan radikal bebas

yang ada, menginduksi sinyal dalam sel, dan memperbaiki kerusakan akibat stres

Jurnal Sehat Indonesia: Vol. 6, No. 2, Juli 2024 | 871

oksidatif (Abdal Dayem dkk., 2017; Schieber & Chandel, 2014b). Klasifikasi antioksidan

dapat dibagi menjadi 2 jenis, yaitu non-enzimatik dan enzimatik seperti superoxide

dismutase (SOD), catalase (CAT), dan glutathione peroxidase (GPx). Sumber-sumber

alami seperti dari tanaman merupakan cara untuk memperoleh antioksidan dalam tubuh

(Alimsyah, 2020; Xu dkk., 2017).

Pohon kelor (Moringa oleifera L) sudah terbukti secara ilmiah sebagai sumber gizi

yang memberikan manfaat yang penting. Kelor dikenal dengan beberapa sebutan, antara

lain The miracle Tree, Tree for life, dan Amazing Tree. Sebutan tersebut dicetuskan karena

semua elemen dari pohon kelor seperti daun, buah, biji, bunga, kulit batang hingga akar

memiliki manfaat yang istimewa (Saputra dkk., 2021). Salah satu bagian yang memiliki

manfaat yang paling signifikan dari kelor adalah daunnya. Hasil penelitian sebelumnya

menunjukan bahwa daun kelor kaya akan mineral, asam amino essensial, serta berbagai

antioksidan seperti vitamin C, vitamin E, flavonoid, tanin, dan masih banyak lainnya.

Bahkan, kemampuan antioksidan daun kelor segar mencapai 7 kali lipat dari vitamin C

(Oduro dkk., 2008). Daun kelor juga mengandung flavonoid jenis kuersetin, yang

memiliki kekuatan antioksidan 4 sampai 5 kali lebih besar dibandingkan dengan vitamin

C dan vitamin E (Daba, 2016).

Menyadari potensi antioksidan serta khasiat yang terdapat pada daun kelor

(Moringa oleifera L), peneliti tertarik untuk mengeksploarasi lebih lanjut total kapasitas

antioksidan dari ekstrak daun kelor menggunakan tiga metode yang berbeda yaitu, DPPH

(2,2-difenil-1-pikrilhidrazil), FRAP (Ferric Reducing Antioxidant Power), dan ABTS

(2,2'-azinobis-(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid)). Tujuan penelitian ini adalah

membandingkan kapasitas antioksidan yang diperoleh dari ketiga metode berbeda

tersebut guna menentukan metode mana yang memberikan nilai kapasitas antioksidan

tertinggi.

Metode Penelitian

Penelitian eksperimental yang bersifat in vitro dengan tujuan untuk menguji

kapasitas total antioksidan menggunakan dengan tiga metode yaitu, DPPH, FRAP, dan

ABTS dengan mengukur nilai inhibitor concentration (IC

). Data diambil absorbansi

menggunakan Spektrofotometer genesys 30-Vis dan disajikan dalam format tabel dan

kurva. Kemudian data dianalisis dengan aplikasi GraphPad prism v.7.0. Penelitian

dilaksanakan di Laboratorium Biokimia dan Biologi Molekuler, Gedung J Lantai 1,

Fakultas Kedokteran, Universitas Tarumanagara, Jl. S. Parman, No.1 Grogol, Jakarta

Barat.

Alat dan Bahan

Selama proses studi digunakan alat dan bahan. Peralatan studi berupa blender,

lemari pendingin, timbangan digital, Alumunium foil, kertas saring, kapas, plastic wrap,

corong perkolasi, batang pengaduk, gelas ukur, gelas kimia, labu ukur, labu erlenmeyer,

tabung reaksi, saringan, penjepit kayu, rak tabung reaksi, micropipette, microtube,

spatula, pipet tetes, vortex mixer, Spektrofotometer genesys 30-Vis, dan Rotatory

Jurnal Sehat Indonesia: Vol. 6, No. 2, Juli 2024 | 872

evaporator. Bahan yang digunakan yaitu ekstrak daun kelor (Moringa oleifera L)

meliputi air, air suling, DPPH, ABTS, FRAP, larutan metanol, larutan etanol, sodium

acetate trihydrate, TPTZ, FeCl

.6H

O, asam asetat, kalium persulfate.

Pembuatan Ekstrak Daun Kelor

Pembuatan esktrak daun kelor dimulai dengan dipisahkan daun dengan batangnya

dan dibiarkan mengering pada suhu ruang di tempat yang terlindung dari sinar matahari

untuk mencegah oksidasi. Setelah daun kering, daun digiling menjadi bentuk serbuk

(simplisia). Simplisia kemudian diekstrak menggunakan metode dingin, yaitu maserasi

dan perkolasi dengan campuran metanol. Setelah didapatkan ekstrak selanjutnya

dievaporasi menggunakan rotatory evaporator hingga menjadi bentuk pasta.

Penelitian

1. Pembuatan Larutan DPPH

1,97 mg bubuk DPPH ditimbang, kemudian dilarutkan dalam 100 mL metanol dalam

labu takar untuk membuat larutan DPPH. Setelah itu dihomogenisasi dan ditutup

dengan alumunium foil agar cahaya tidak masuk.

2. Pembuatan Larutan FRAP

Untuk membuat larutan FRAP, pertama-tama timbang 187 mg sodium acetate

trihydrate dan campurkan dengan 16 mL asam asetat. Tambahkan air suling

(aquades) hingga mencapai volume total 250 mL dalam labu ukur. Selanjutnya,

larutkan 150 mg TPTZ dalam 40 mL HCl, lalu tambahkan air suling hingga volume

larutan mencapai 50 mL. Untuk larutan ketiga, larutkan 270 mg FeCl₃·6H₂O dengan

air suling hingga mencapai volume 100 mL dalam labu ukur. Setelah ketiga larutan

ini siap, campurkan 25 mL larutan sodium acetate, 2,5 mL larutan TPTZ, dan 2,5 mL

larutan FeCl₃·6H₂O ke dalam satu labu ukur. Tambahkan air suling hingga total

volume campuran mencapai 100 mL. Larutan FRAP yang sudah dibuat ini siap

digunakan untuk pengujian lebih lanjut.

3. Pembuatan Larutan ABTS

Larutan ABTS dibuat dengan membagi ABTS (28,4 mg) dan kalium persulfat

(14 mg) menjadi dua wadah yang sama besar. Masing-masing wadah kemudian

dicampur dengan 20 mL etanol. Mereka dihomogenisasi dan diinkubasi selama

12 jam di ruangan dingin. Setelah itu kedua larutan tersebut ditempatkan dalam

wadah segar dan dicampur dengan etanol hingga volumenya mencapai 100 mL.

4. Pengukuran Aktivitas Antioksidan Metode DPPH

Sebanyak 0,01 gram ekstrak daun kelor dilarutkan dalam 10 mL metanol

menggunakan gelas ukur. Selanjutnya, ekstrak ini dimasukkan ke dalam tabung

reaksi dengan konsentrasi masing-masing 50 µg/mL, 100 µg/mL, 150 µg/mL, dan

200 µg/mL (Tabel 1). Metanol kemudian ditambahkan hingga total volume dalam

tabung reaksi mencapai 10 mL. Dalam tabung reaksi baru, campurkan masing-

masing 0,5 mL larutan sampel dengan 3,5 mL larutan DPPH. Setelah itu, campuran

ini dihomogenkan dan didiamkan di ruangan gelap selama 30 menit, kemudian

Jurnal Sehat Indonesia: Vol. 6, No. 2, Juli 2024 | 873

analisis dilakukan menggunakan spektrofotometer Genesys 30-Vis pada panjang

gelombang 517 nm.

Tabel 1 Konsentrasi, % Inhibisi, dan Nilai IC

Ekstrak Daun Kelor

dengan Metode DPPH

Konsentrasi

Ekstrak

(µg/mL)

Rata – rata

Absorbansi

(µg/mL)

Persentase

Inhibisi

(%)

(µg/mL)

0,323

40,842

71,011

100

0,2

63,370

150

0,154

71,795

200

0,079

85,531

5. Pengukuran Aktivitas Antioksidan Metode FRAP

Sebanyak 0,02 gram ekstrak daun kelor ditimbang dan dilarutkan dalam 10 mL air

suling (aquades). Selanjutnya, larutan ini diatur dalam berbagai konsentrasi yaitu 5

µg/mL, 10 µg/mL, 15 µg/mL, dan 20 µg/mL sebagaimana tercantum pada Tabel 2.

Kemudian, aquades ditambahkan hingga volume total mencapai 10 mL. Pada tabung

reaksi, larutan ekstrak ini dicampur dengan larutan FRAP dalam perbandingan 1:3,

artinya 1 mL sampel dicampur dengan 3 mL larutan FRAP. Campuran tersebut

kemudian dianalisis menggunakan spektrofotometer Genesys 30-Vis pada panjang

gelombang 593 nm untuk menghasilkan kurva standar.

Tabel 2 Konsentrasi, % Inhibisi, dan Nilai IC

Ekstrak Daun Kelor

dengan Metode FRAP

Konsentrasi

Ekstrak

(µg/mL)

Rata – rata

Absorbansi

(µg/mL)

Persentase Inhibisi

(%)

(µg/mL)

0,323

18,750

16,943

0,2

34,177

0,154

45,883

0,079

56,667

6. Pengukuran Aktivitas Antioksidan Metode ABTS

Sebanyak 0,02 gram ekstrak daun kelor dilarutkan dalam 10 mL etanol. Ekstrak ini

kemudian disiapkan dalam lima tabung reaksi dengan konsentrasi masing-masing 10

µg/mL, 20 µg/mL, 30 µg/mL, 40 µg/mL, dan 50 µg/mL (Tabel 3). Selanjutnya,

setiap ekstrak tersebut dicampurkan dengan larutan ABTS dalam tabung reaksi baru

dengan rasio 1:1, yaitu 1 mL ekstrak dicampur dengan 1 mL larutan ABTS. Hasil

campuran ini kemudian dianalisis menggunakan spektrofotometer Genesys 30-Vis

pada panjang gelombang 734 nm untuk membuat kurva standar.

Tabel 3 Konsentrasi, % Inhibisi, dan Nilai IC

Ekstrak Daun Kelor

dengan Metode ABTS

Konsentrasi Ekstrak

(µg/mL)

Rata – rata

Absorbansi

(µg/mL)

Persentase Inhibisi

(%)

(µg/mL)

Jurnal Sehat Indonesia: Vol. 6, No. 2, Juli 2024 | 874

0,056

26,316

25,553

0,045

40,789

0,03

60,526

0,023

69,737

0,011

85,526

Hasil Dan Pembahasan

Hasil Uji Kapasitas Antioksidan dengan Metode DPPH

Penentuan kapasitas antioksidan total menggunakan metode DPPH dilakukan

dengan menghitung nilai IC

, yaitu konsentrasi sampel yang dibutuhkan untuk

menurunkan aktivitas DPPH sebesar 50%. Perubahan warna dari ungu menjadi kuning

digunakan sebagai indikator utama dalam penentuan ini. Kurva standar untuk ekstrak

daun kelor menunjukkan nilai R² sebesar 0,9637 (Gambar 1). Hasil yang diperoleh

menunjukkan bahwa nilai IC50 untuk metode DPPH adalah 71,011 µg/mL (Tabel 1),

yang menunjukkan bahwa ekstrak ini memiliki aktivitas antioksidan yang kuat. Dalam

penelitian yang dilakukan oleh Alimsyah et al, nilai IC50 untuk ekstrak daun kelor

ditemukan sebesar 79 µg/mL. Sementara itu, penelitian Asisi dkk. (2021)

mengindikasikan bahwa ekstrak daun kelor memiliki kapasitas antioksidan sebesar

68,321 µg/mL. Hal ini menegaskan bahwa ekstrak daun kelor memiliki kapasitas

antioksidan yang kuat menurut metode DPPH dan berpotensi besar sebagai sumber

antioksidan.

Gambar 1 Kurva Persentase Inhibisi Ekstrak Daun Kelor dengan Metode DPPH

Hasil Uji Kapasitas Antioksidan dengan Metode FRAP

Pengukuran aktivitas antioksidan menggunakan metode FRAP berkaitan dengan

kemampuan campuran antioksidan untuk mereduksi zat besi melalui transfer elektron.

Dalam lingkungan asam, antioksidan mengubah ion Fe³⁺ menjadi Fe²⁺, yang ditandai

dengan perubahan warna dari kuning menjadi biru. Kurva standar untuk ekstrak daun

kelor menunjukkan nilai R² sebesar 0,9927 (Gambar 2). Nilai IC₅₀ ekstrak daun kelor

adalah 16,934 μg/mL (Tabel 2), yang menunjukkan bahwa ekstrak ini memiliki kapasitas

Jurnal Sehat Indonesia: Vol. 6, No. 2, Juli 2024 | 875

antioksidan yang sangat kuat. Penelitian ini konsisten dengan hasil yang dilaporkan oleh

Jaiswal dkk. (2017), di mana nilai IC₅₀ untuk ekstrak daun kelor adalah 28,65 μg/mL,

juga termasuk dalam kategori antioksidan yang sangat kuat. Dalam studi lain oleh

Wangcharoen dan Gomolmanee (2011), nilai IC₅₀ ekstrak daun kelor ditemukan sangat

kuat pada 5,44 μg/mL. Hasil-hasil ini menunjukkan bahwa ekstrak daun kelor memiliki

potensi yang signifikan sebagai sumber antioksidan alami. Aktivitas antioksidan yang

tinggi ini dapat memberikan perlindungan terhadap sel-sel dari kerusakan yang

disebabkan oleh radikal bebas oksidatif.

Gambar 2 Kurva Persentase Inhibisi Ekstrak Daun Kelor dengan Metode FRAP

Hasil Uji Kapasitas Antioksidan dengan Metode ABTS

Pengujian antioksidan menggunakan metode ABTS didasarkan pada prinsip pengukuran

pengurangan warna kation ABTS, yang digunakan untuk menilai kapasitas antioksidan

dalam bereaksi langsung dengan radikal kation ABTS. Aktivitas antioksidan dievaluasi

melalui perubahan warna dari biru-hijau menjadi transparan. Standar kurva ekstrak daun

kelor menunjukkan nilai R² sebesar 0,9908 (Gambar 3). Nilai IC₅₀ untuk ekstrak daun

kelor adalah 25,533 μg/mL (Tabel 3), yang tergolong dalam kategori antioksidan yang

sangat kuat. Hasil ini sejalan dengan penelitian oleh Asisi dkk. (2021), yang mendapatkan

nilai IC₅₀ sebesar 11,73 μg/mL untuk ekstrak daun kelor. Penelitian lain oleh Peñalver

dkk. (2022) juga menunjukkan nilai IC₅₀ sebesar 41,40 μg/mL. Konsistensi hasil

penelitian ini dengan penelitian sebelumnya menunjukkan bahwa ekstrak daun kelor

mengandung senyawa aktif yang efektif dalam menghambat radikal bebas.

Jurnal Sehat Indonesia: Vol. 6, No. 2, Juli 2024 | 876

Gambar 3 Kurva Persentase Inhibisi Ekstrak Daun Kelor dengan Metode ABTS

Kesimpulan

Berdasarkan hasil penelitian ini, dapat disimpulkan bahwa kapasitas total

antioksidan ekstrak daun kelor (Moringa oleifera L) bervariasi secara signifikan

tergantung pada metode pengujian yang digunakan. Metode FRAP (Ferric Reducing

Antioxidant Power) menunjukkan kapasitas antioksidan tertinggi, diikuti oleh metode

ABTS (2,2'-azinobis-(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid)), sedangkan metode DPPH

(2,2-difenil-1-pikrilhidrazil) menunjukkan kapasitas antioksidan terendah. Perbedaan ini

menunjukkan bahwa ekstrak daun kelor lebih efektif dalam sistem yang melibatkan

reduksi ion besi (seperti yang diukur oleh metode FRAP) dibandingkan dengan sistem

yang melibatkan reaksi dengan radikal kation (seperti yang diukur oleh metode ABTS

dan DPPH). Dengan demikian, ekstrak daun kelor memiliki potensi besar sebagai sumber

antioksidan alami yang dapat digunakan dalam berbagai aplikasi, khususnya yang

memerlukan aktivitas antioksidan kuat untuk melindungi sel dari kerusakan oksidatif

yang disebabkan oleh radikal bebas.

Daftar Pustaka

Abdal Dayem, A., Hossain, M., Lee, S., Kim, K., Saha, S., Yang, G.-M., Choi, H., & Cho, S.-G.

(2017). The Role of Reactive Oxygen Species (ROS) in the Biological Activities of Metallic

Nanoparticles. International Journal of Molecular Sciences, 18(1), 120.

https://doi.org/10.3390/ijms18010120

Alimsyah, F. (2020). Optimalisasi Campuran Ekstrak Etanol Buah Pepaya (Carica papaya L.) dan

Ekstraks Etanol Daun Kelor (Moringa oleifera) dalam Krimsebagai Antiaging . Moring.

Jurnal Kesehatan STIKES Darul Azhar Batulicin, 9(1).

Asisi, N., Uliyah, U., Nurul, F. A., & Hasrawati, H. (2021). Aktivitas Antioksidan Ekstrak Daun

Kelor (Moringa oleifera L.) dan Pengembangannya Menjadi Bentuk Sediaan Gel. Jurnal

As-Syifaa, 13(1), 1–6.

Daba, M. (2016). Miracle Tree: A Review on Multi-purposes of Moringa oleifera and Its

Implication for Climate Change Mitigation. Journal of Earth Science & Climatic Change,

7(8). https://doi.org/10.4172/2157-7617.1000366

Jurnal Sehat Indonesia: Vol. 6, No. 2, Juli 2024 | 877

Jaiswal, S. G., Patel, M., Saxena, D. K., & Naik, S. (2017). Comparison of Measurements of

Antioxidant Activity in the Selected Leafy Vegetables Depending on Extraction Solvent.

Journal of Horticultural Research, 25(2), 75–80. https://doi.org/10.1515/johr-2017-0023

Oduro, I., Ellis, W. O., & Owusu, D. (2008). Nutritional potential of two leafy vegetables:

Moringa oleifera and Ipomoea batatas leaves. Scientific Research and Essay, 3(2), 57–60.

Ogbunugafor, H. A., Eneh, F. U., Ozumba, A. N., Igwo-Ezikpe, M. N., Okpuzor, J., Igwilo, I. O.,

Adenekan, S. O., & Onyekwelu, O. A. (2011a). Physico-chemical and Antioxidant

Properties of Moringa oleifera Seed Oil. Asian Network for Scientific Information, 10(5),

409–414.

Ogbunugafor, H. A., Eneh, F. U., Ozumba, A. N., Igwo-Ezikpe, M. N., Okpuzor, J., Igwilo, I. O.,

Adenekan, S. O., & Onyekwelu, O. A. (2011b). Physico-chemical and Antioxidant

Properties of Moringa Oleifera Seed Oil. Pakistan Journal of Nutrition, 10(5), 409–14.

Peñalver, R., Martínez-Zamora, L., Lorenzo, J. M., Ros, G., & Nieto, G. (2022). Nutritional and

Antioxidant Properties of Moringa oleifera Leaves in Functional Foods. Foods, 11(8), 1107.

https://doi.org/10.3390/foods11081107

Saputra, R. A., Santoso, U., Heiriyani, T., Jumar, J., Wahdah, R., Syarifuddin, N. A., Putri, K. A.,

Navira, A., & Aisyah, N. (2021). The Miracle Tree: Manfaat Kelor Terhadap Kesehatan

Masyarakat. Jurnal Pengabdian ILUNG (Inovasi Lahan Basah Unggul), 1(2), 54.

https://doi.org/10.20527/ilung.v1i2.3959

Schieber, M., & Chandel, N. (2014a). Ros function in redox signaling and oxidativestress.

Current Biology, 24(10), 453–462.

Schieber, M., & Chandel, N. S. (2014b). ROS Function in Redox Signaling and Oxidative Stress.

Current Biology, 24(10), R453–R462. https://doi.org/10.1016/j.cub.2014.03.034

Tariq, S., Umbreen, H., Noreen, R., Petitbois, C., Aftab, K., Alasmary, F. A., Almalki, A. S., &

Mazid, M. A. (2022). Comparative Analysis of Antioxidants Activity of Indigenously

Produced Moringa Oleifera Seeds Extracts. BioMed Research International, 2022, 1–11.

https://doi.org/10.1155/2022/4987929

Wangcharoen, W., & Gomolmanee, S. (2011). Antioxidant Capacity and Total Phenolic Content

of Moringa oleifera Grown in Chiang Mai, Thailand. Thai Journal of Agricultural Science,

44(5), 118–124.

Xu, D.-P., Li, Y., Meng, X., Zhou, T., Zhou, Y., Zheng, J., Zhang, J.-J., & Li, H.-B. (2017).

Natural Antioxidants in Foods and Medicinal Plants: Extraction, Assessment and Resources.

International Journal of Molecular Sciences, 18(1), 96.

https://doi.org/10.3390/ijms18010096